12ème Fiche:
L'héritage d'armes chimiques phénotype de Cannabis sativaL.
PM Etienne de Meijer 1 , un , Manuela Bagatta b , Andrea Carboni b , Paola Crucitti b , Cristiana Moliterni
VM b , Paolo Ranalli b , et Mandolino Giuseppe b
une BV Hortapharm, 1075 VS, Amsterdam, Pays-Bas
b Istituto Sperimentale per le Colture Industriali, 40128 Bologne, Italie
Auteur correspondant: Giuseppe Mandolino, Via di Corticella 133, 40128 Bologne, en Italie,. g.mandolino @ isci.it(E-mail)
Communiquer éditeur: CS G ASSER
Résumé
Quatre croisements ont été faits entre consanguins Cannabis sativa plantesavec cannabidiol pur (CDB) et pure -9-tétrahydrocannabinol (THC) chémotypes.Toutes les plantes appartenant à la F 1's ont été analysés par chromatographie en phase gazeuse pour la composition en cannabinoïdes et trouve constamment d'avoir un CDB-THC chémotype mixtes.Dix individuelles F 1 plantes ont été autofécondées, et 10 F consanguines 2enfants ont été recueillies et analysées.Dans tous les cas, une ségrégation des trois chémotypes (CDB pure, mixte CBD-THC, le THC pur et) montage d'un proportion 01:02:01 a été observée. Le CBD / THC a été constaté de manière significative descendance spécifiques et transmis par chaque F 1 de la F 2 's qui en découlent. Un modèle impliquant un locus, B , avec deux allèles, B D et B T , est proposé, avec les deux allèles codominants être. Les chémotypes sont interprétées comme étant dues au génotype B D / B T à la B locus, tandis que le pur-chémotype plantes sont dues à l'homozygotie au B locus (soit B D / B D ou B T / B T ). Il est suggéré que codominance est due à la codification par les deux allèles pour les différentes isoformes de lasynthase même, ayant une spécificité différente pour la conversion de l'cannabigerol précurseur commun dans la CDB ou THC, respectivement. Les F 2 groupes de ségrégation ont été utilisés dans un en vrac analyse de ségrégation de l'ADN mis en commun pour le dépistage des amorces RAPD, trois chémotype associée marqueurs sont décrits, dont l'un a été transformé en une-région amplifiée de séquence (SCAR) marqueur et montre le lien étroit à chémotype et codominance.
C HEMOTYPICAL la diversité dans le cannabis: La classe de produits secondaires propres à l'espèce dioïque Cannabis sativa L. (Chanvre) est l'substances terpénophénoliques connu sous le nom cannabinoïdes, qui s'accumulent principalement dans les trichomes glandulaires de la plante (M ECHOULAM 1970 ; H AMMOND et M AHLBERG 1977 ). Plus de 60 cannabinoïdes sontconnus (DE A à Z eeuw et al. 1972 A ), Le cannabidiol plus abondantes étant (CDB) et -9-tétrahydrocannabinol (THC). D'autres cannabinoïdes commune sont cannabichromene (CBC; H Olley et al. 1975 ) Et cannabigerol (CBG). Ces cannabinoïdes ont une chaîne latérale pentyle, mais aussi leurs homologues propyle se produisent, qui sont indiqués comme cannabidivarin (CBDV), -9-tetrahydrocannabivarin (THCV), cannabichromevarin (CBCV), et cannabigerovarin (CBGV), respectivement (DE A à Z eeuw et al. 1972 B ).
S MALL et B ECKSTEAD 1973 furent les premiers à systématiquement enquête auprès d'un grand nombre d'adhésions de cannabis pour la variabilité dans la composition des cannabinoïdes. Ils ont reconnu, sur une population moyenne de base, trois phénotypes chimiques (chémotypes): chémotype I, avec une teneur en THC> 0,3% et une teneur en CBD <0,5% de l' inflorescence de matière sèche, un chémotype intermédiaire II, avec la CDB que le cannabinoïde répandue mais aussi THC présent dans diverses concentrations, et un chémotype III, avec faible teneur en THC particulièrement contenu. Ces chémotypes étaient censés être associés principalement à une provenance géographique. Aucune étude sur les rôles respectifs de l'hérédité et l'environnement sur l'expression chémotype ont été effectuées.modèles tripartite de CBD / distributions ratio THC ont été reconnus au sein des populations parF OURNIER et P ARIS 1979 et par F OURNIER 1981 . D E M EIJER et al. 1992 , Dans une enquête d'une grande collection de cannabis, a également constaté que les plantes appartenant à la même population montrent souvent distincts CBD / ratios THC. Un rare, chémotype supplémentaires, caractérisée par une très faible teneur en THC des deux et la CDB et avec GBC comme constituant majoritaire, a plus tard été identifié par F OURNIER et al. 1987 .
La biosynthèse des cannabinoïdes
Dans la plante de cannabis, les cannabinoïdes sont synthétisés et accumulés comme des acides de cannabinoïdes [ par exemple , l'acide cannabidiolique (CBDA)]. Lorsque le produit est séché à base de plantes, stockés, ou chauffés, les acides decarboxylize progressivement ou complètement dans les formes neutres (par exemple , CBDA CDB). Pour plus de commodité, cet article indique tous les cannabinoïdes par les abréviations pour leurs formes neutres.
La première étape spécifique dans la biosynthèse des cannabinoïdes est la condensation de réaction de géranylpyrophosphate (PPM) avec le polycétide, l'acide olivetolic (OA), qui est catalysée par l'enzyme géranylpyrophosphate: olivetolate geranyltransferase (GOT; F ELLERMEIER et Z ENK 1998 ;F ELLERMEIER et al. 2001 ). La CBG qui en résulte est le précurseur direct de la CDB (T AURA et al. 1996 ) Et CBC (G AONI et M ECHOULAM 1966 ; M Orimoto et al. 1997 ,M Orimoto et al. 1998 ). Dans les anciennes références THC était considéré comme un produit de cyclisation en outre de la CDB (S HOYAMA et al. 1974 ). Plus tard,F OURNIER et P ARIS 1980 supposer que cette voie, la CBG CDB THC, est caractéristique des souches de fibres seulement. Pour les souches de drogue, qui sont souvent dépourvues de même des traces montants de la CDB, la conversion directe de la CBG en THC était censé être typique.Aujourd'hui, le THC est considéré comme provenant directement du GBC dans toutes les variétés de cannabis ( figure 1B ), l'existence de la CDB enzyme postulé-cyclase catalysant la synthèse de THC par la CDB n'a pas été confirmée expérimentalement (T AURA et al. 1995 ). L'homologue de propyle de la CBG, à savoir , CBGV, est formé si un C 10 , au lieu de la commune C 12 version de l'arthrose, se condense avec GPP (S HOYAMA et al. 1984 ; F ELLERMEIER et Z ENK 1998 .) Les in vivo conversions de la CBG (V) dans les produits finis THC (V), la CDB (V) et CBC (V) sont enzymatiques, et pour chaque réaction d'une enzyme a été identifié: synthase THC (T AURA et al. 1995 ), La CDB synthase (T AURA et al. 1996 ), Et CBC synthase (M Orimoto et al. 1998 ). S HOYAMA et al. 1984 démontré que l'extrait enzymatique à partir d'une souche de cannabis contenant de la CDB et le THC est capable de convertir en CBGV THCV et CBDV.Cette dernière constatation implique que le THC, CBD, et probablement aussi synthase Radio-Canada,sont en mesure de traiter homologues de la CBG, peu importe la longueur de leur chaîne latérale alkyle.

Figure 1. (a) chromatogrammes GC d'individus femelles appartenant à trois chémotypes différents (CDB pure, pure-THC, et chémotype mixtes) à partir de lignées différentes sont représentées. L'axe horizontal indique le temps de rétention et l'axe vertical du signal du détecteur (picoamps).et THC pics apparaissent dans la CDB de 10.439 à 10.442 et 11.063-11.075 intervalle min, respectivement. (B) La voie de biosynthèse des cannabinoïdes est montré (modifié d'aprèsF ELLERMEIER et al. 2001 ). 1, géranylpyrophosphate; 2, l'acide olivetolic; 3, CBG (V); 4, CBC (V); 5, le THC (V); 6, la CDB (V); I, géranylpyrophosphate: geranyltransferase olivetolate (GOT); II, Radio-Canada (V) synthase; III, le THC (V) synthase; IV, la CDB (V) synthase. R 1 (= C- 3 H7 ) et R 2 (= C- 5 H 11 ) et d'indiquer les formes pentyle propyle des différents métabolites.
héritage Chémotype
Il n'est guère douteux que les facteurs environnementaux ont une forte influence dans la modulation de la quantité de cannabinoïdes présents dans les différentes parties des plantes à différents stades de croissance, tel que démontré par un certain nombre d'articles ( par exemple , L YDON et al. 1987 ; B AOSC et al. 1997 ). Toutefois, la répartition tripartite des ratios THC CDB dans la plupart des populations est susceptible de sous-tendent un héritage discret du caractère chémotype. En effet, la plupart des auteurs s'accordent que les profils génétiques des cannabinoïdes sont en forte contrôle. Selon B Rutler et DER M ANDEROSIAN 1978 , Leratio de la CDB / THC est un marqueur chimique de signification taxonomique. F OURNIER et al. 1987 a déclaré que le profil de cannabinoïdes de chaque plante et donc son CBD / THC ratio est principalement dépendante de son bagage génétique et que chacun plante appartient toujours à son groupe chimique distincte tout au long de son cycle de vie.
Aspects quantitatifs et qualitatifs de l'accumulation des cannabinoïdes sont souvent confondues comme l'a souligné H ILLIG 2002 dans une critique des observations sur S YTNIK et S TELMAH 1999 .Pour spécifier la cible de l'article actuel, il est suffisant pour exprimer le rendement de certains un cannabinoïde par unité de surface des cultures comme un caractère complexe,
(1)
CY où n est le rendement des cannabinoïdes, n (grammes par mètre carré); DM est le montant total du sol sec, au-dessus- de la biomasse (en grammes par mètre carré); P flor est la proportion du poids des feuilles et des bractées inflorescence (grammes par gramme); C tot est le cannabinoïde contenu total dans les feuilles et les inflorescences fraction bractée (grammes par gramme), et PC n est «pureté», la proportion des cannabinoïdes n cannabinoïdes dans la fraction totale (grammes par gramme).
Les trois premières composantes de déterminer le rendement des cannabinoïdes sont probablement caractères polygéniques pas liée à métabolique spécifique des voies et sont fortement influencés par l'environnement. En revanche, ce dernier terme de l'équation 1 , la proportion d'un cannabinoïde certains cannabinoïdes dans la fraction totale, dépend strictement de la métaboliques des voies suivies par la plante pour convertir précurseurs communs en produits finis spécifiques. L'objectif de cet article est sur les proportions des deux le plus souvent trouvés et abondante cannabinoïdes, la CDB et de THC, et limite la définition du chémotype au rapport de la CBD / THC, avec les deux termes exprimés en pourcentage du poids sec inflorescence.
F OURNIER et P ARIS 1979 , F OURNIER et P ARIS 1980 et F OURNIER 1981 fait état d'une coupe de séparation claire / ratios THC CDB au sein de cultivars à fibres français. Deux groupes peuvent être distingués dans un rapport de 1:4, le premier composé de plantes avec un mélange de THC-profils de la CDB et l'autre des plantes avec la CDB assez pure profils. Y OTORIYAMA et al. 1980 analysé les F 2 de F 1 hybrides contenant à la fois de la CDB et de THC dans des quantités semblables et la ségrégation de la pure chémotypes avec la CDB, mixte CBD-THC, le THC pur et profils dans un rapport 1:2:1. Les générations suivantes de la CDB plantes pures ont été étudiées plus complètement et ils ont montré un CDB chémotype fixe. B écus et al. 1998 évalué une ségrégation F 2 et supposé un héritage monogéniques de THC et CBD ratios. Ce n'a pas été confirmée par d'autres auteurs (S YTNIK et S TELMAH 1999 ).
marqueurs d'ADN dans le cannabis
Aujourd'hui, le concept de cannabis comme un genre monotypique est largement acceptée; taxonomique, morphologiques, et des études biométriques confirment la continuité de son patrimoine génétique en dépit de la très forte variation trouve à l'intérieur et entre les populations (S MALL et al. 1976 ;DE M EIJER et K Eizer 1996 ).Dans les quelques dernières années, l’existence d'une seule espèce dans le genre a été confirmé par des études de marqueurs moléculaires qui montrent un nombre limité de ségrégation des différents groupes au sein du genre Cannabis et un haut degré de polymorphisme extrêmement, estimée à la même ampleur au sein et entre les populations (F AETI et al. 1996 ; F ORAPANI et al. 2001 ). Dans quelques-uns des plus connus cultivars de chanvre, par exemple , Carmagnola, le degré de polymorphisme a été estimée par hasard ADN polymorphe amplifié (RAPD) pour impliquer 80% des marqueurs de score, et les données suggèrent un énorme réservoir de variation à l'intérieur même de la plupart des sélectionnés variétés de cannabis considérées lors de l'étude. Enfin, dans les populations dioïque, la présence d'un nombre élevé de marqueurs spécifiques des hommes, probablement associé avec le chromosome Y, a été trouvé par RAPD et polymorphe amplifié au fragment d'analyse (M ANDOLINO et al. 1999 , M ANDOLINO et al. 2002 ; F Lachowsky et al. 2001 ).
But des travaux
Cette étude vise à clarifier l'héritage de chémotype cannabinoïdes, en isolant la CDB pure et pure des lignées consanguines de THC. Un héritage simple modèle a été proposé après avoir fait des croisements entre les chemotypically lignes contrastantes et d'examiner un certain nombre de F 1 et F 2 descendances. Une analyse RAPD des lignées parentales et de leur progéniture a été effectuée et un certain nombre de marqueurs associés à chémotype ont été décrites.
MATÉRIELS ET MÉTHODES
évaluation Chémotype:
Mature grappes florales ont été recueillies auprès de chaque individu(plante). Les grappes de fleurs ont été séchés à l'air, et 50 mg de feuilles matériel a été pesés dans un tube de filtration (Ultrafree-CL, 0,1 um; Millipore, Bedford, MA). Les étapes suivantes ont été ensuite répété quatre fois: 1 ml d'éthanol (99,7%) a été ajouté, l’échantillon a été traité par ultrasons dans l'éthanol pendant 15 min, et l'extrait a été centrifugé à 4000 tr / min pendant 10 min. Ensuite, le total de 4 ml d'éthanol contenant des cannabinoïdes extrait a été transféré à partir du tube de filtration à un ml en flacon de 5; 0,25 ml d'une solution stock phénanthrène (10 mg / ml dans l'éthanol) a été ajouté comme standard interne et le volume a été ajusté à 5 ml avec de l'éthanol. Enfin, des extraits ont été homogénéisés et transférés dans des flacons de GC. Chromatographie en phase gaz analyses ont été réalisées sur une imprimante Hewlett-Packard GC 6890 équipé d'un échantillonneur automatique et un détecteur à ionisation de flamme. Deux colonnes ont été utilisées: (légèrementpolaires) HP-5, 320 um x 30 m, avec-um film de 0,25 pour l'analyse quantitative des charges générales échantillon plus grand, et le non polaires HP-1, 100 um x 40 m, avec 0,20 film um pour une séparation précise de la CDB de la CBC. l'humidité moyenne du contenu par descendance étudiée a été déterminée par séchage des échantillons de la matière florale à 105 ° pendant 3 heures. Correction d'humidité et facteurs d'une équation linéaire d'étalonnage, obtenue avec un CDB gamme de concentration, ont été utilisés pour convertir les dérivés de pointe zones-GC concentrations en poids sec. Identités des composés ont été déterminées en comparant les temps de rétention avec ceux des étalons purs.
Constitution d'une lignée pure:
Tous parentaux utilisées dans cette étude ont été doublement plantes consanguines (S 2 's) obtenu grâce à l'autofécondation de certains clones femelles de la collection de cannabis Hortapharm BV, Pays-Bas.Les plantes ont une ou l'autre de la CDB, ou THC, comme la prédominance des cannabinoïdes. Le clone 00.45.1 a été une exception, ayant à la fois de la CDB et de THC, en quantités similaires. Les clones ont été obtenus par in vivo propagation des branches latérales. Une personne de chaque clone a été partiellement sexe inversé selon la procédure décrite par M Ohan R AM et S ETT 1982 et a permis à l'autopollinisation dans l'isolement. Dans de nombreux cas il a été possible de recueillir suffisamment de graines viables pour constituer une génération consanguines première ligne (S 1 ), qui a été entièrement féminin et montrant le chémotype même que le clone parental. Le 00.45.1 S 1 , toutefois, séparés enpure CDB, mixte CBD-THC, le THC pur et individus. Ici, outre la consanguinité a été limitée à la CDB plantes pure. Un S 2 génération a été produite à partir de certains des S 1 plantes, selon la même procédure décrite ci-dessus. Les travaux ont porté sur six S 2 lignes, brièvement décrites dans le tableau 1 . Un échantillon de feuilles ont été recueillies pour l'analyse de l'ADN de 10 à 20 plants par S2 .

Tableau 1. Caractéristiques des lignées consanguines parentales
La production de F 1 de l 'et F 2 's:
Sept plantes individuelles appartenant aux six S 2 lignes avec contraste chémotypes ont été choisis pour produire des hybrides F 1 'art L'individu plantes femelles utilisés comme parents mâles ont été partiellement infirmé le sexe et placés dans des armoires d'isolement avec les parents femelles. Les croisements réalisés sont résumés dans le Tableau 2 .

Tableau 2. Pedigrees et les codes de la descendance étudiée
La saison suivante, un nombre variable de plantes individuelles de l' autre F quatre 1 's ont été cultivées et leur chémotype a été déterminée. Encore une fois, des échantillons de feuilles de 5 à 20 plantes appartenant à la F quatre 1 's ont été prises pour l'analyse moléculaire. Dix F 1 des plantes (3 usines de croix 99,3, 3 de 99,4, 1 de 99,5, et 3 de 99,6; tableau 2 ) ont été de nouveau traité pour obtenir la réversion du sexe partielle, isolée, et a permis de mettre en F 2 graines. Les graines ont été semées etun nombre variable de F 2 plantes adultes, allant de 35 à 118, ont été évalués pour chémotype; des échantillons de feuilles ont été collectés à nouveau pour l'analyse de l'ADN. Pendant trois saisons (1998-2000), le cycle complet de l'parental S 2 lignées différentes de la F 2 descendances a été réalisée dans des conditions similaires à effet de serre et l'isolement strict. Confirmation de la féminité génétique de toutes les plantes a été fondée sur l'absence de tout mâle-spécifiques marqueur.
L'analyse moléculaire:
A partir de chaque échantillon de feuille de prises S 2 , F 1 et F 2 plantes individuelles, l'ADN génomique a été préparé en utilisant le kit Phytopure nucléon (Amersham Pharmacia Biotech, dans le Buckinghamshire, au Royaume-Uni). La concentration d'ADN de chaque échantillon a été ajusté à 1 ug / ul après 260-nm lectures, et 20 ng ont été utilisés pour des réactions d'amplification. RAPD analyse à l'aide décamère amorces de séquence aléatoire (achetés à partir Technologies Operon, Alameda, CA, et les acides nucléiques-protéines Service Unit, Laboratoire de biotechnologie de l'Université de la Colombie -Britannique, Canada) et électrophorèse sur gel ont été réalisées comme décrit par ailleurs (F AETI et al. 1996 ). Pour l'analyse de S 2 et F 1 personnes, une matrice composée de 1 et de 0 a été obtenu après avoir marqué les bandes RAPD reproductibles après au moins deux cycles d'amplifications du même modèle. Le nombre de loci et le pourcentage de polymorphisme ont été calculéssur la base de ces matrices. F 2 échantillons ont été analysés par analyse de ségrégation en mélange (M ICHELMORE et al. 1991 ); Sept paires de vracs ont été composées à partir des contrastes (CBD et le THC) chémotypes de la F 2 en mélangeant des quantités équimolaires de l'ADN de 6 à 14plantes individuelles par chémotype pour chacun des sept descendances. L'analyse RAPD du vrac des échantillons d'ADN a été effectuée comme décrit ci-dessus pour une analyse individuelle. les bandes d'ADN unique différencier la F 2 ont été élues vracs du gel en utilisant le gel QIAquick kit d'extraction (Qiagen, Valencia, CA) et cloné dans le vecteur pGEM-T système de vecteur II (Promega, Madison, WI); Escherichia coli cellules (souche JM109 ) ont ensuite été transformées avec le plasmide recombinant en utilisant le Pulser électroporateur Gene (Bio-Rad, Richmond, CA ) et étalées sur des supports adaptés. Les clones positifs ont été séparément en culture, et les inserts ont été excisé du vecteur plasmidique, marqués par le [ - 32 P] dCTP selon F EINBERG et V OGELSTEIN 1983 , Et utilisés comme sondes dans des expériences d'hybridation Southern blot des produits amplifiés par RAPD comme décrit par ailleurs (M ANDOLINO et al. 1999 ), Pour vérifier l'identité du fragment cloné avec le marqueur RAPD original. Une fois l'identité a été confirmée, l'insert d'ADN a été séquencé en utilisant le BigDye Terminator cycle kit de séquençage (Applied Biosystems, Foster City, CA) et le séquenceur automatique AbiPrism 310 Genetic Analyzer (Applied Biosystems). A partir de séquences obtenues, spécifique-mer amorces 20 ont été construits et testés dans des réactions PCR réalisée dans les mêmes conditions décrites par ailleurs (M ANDOLINO et al. 1999 ).
RÉSULTATS
Variation dans la composition des cannabinoïdes:
Des exemples de profils de chromatographie en phase gazeuse cannabis sont présentés dans la figure 1A . Les variations observées dans les adhésions est généralement à deux niveaux de récepteurs cannabinoïdes de type (temps de rétention) et le montant (aires des pics différents), confirmant d'autres auteursobservations (S MALL et B ECKSTEAD 1973 ;DE M EIJER et al. 1992 ). Plantes avec seulement une seule dominante cannabinoïdes (THC ou de la CDB dans cette étude) sont présents que 95-98% du total des cannabinoïdes contenu ( figure 1A , en haut et milieu chromatogrammes). Ces plantes sont appelées ici comme chémotypes pur et se trouve naturellement survenant dans les adhésions ou peuvent être produits par le croisement ou d'auto-fertilisation des plantes montrant une chémotype mixtes ( figure 1A , en bas chromatogramme; voir ci-dessous).
S 2 lignées:
Si le clone à l'origine utilisé pour produire la S 2 a été d'une pure CDB ou chémotype THC, ce chémotype est préservée tout au long de toutes les générations consanguines ultérieure, bien que l'absolu montant des cannabinoïdes dominante montre encore considérable variation, comme en témoignent les écarts-types trouvés ( Tableau 1 ).
L'analyse moléculaire réalisée sur le S 2 lignes a suggéré une réduction de la variation génétique au sein de ces matériaux, en particulier si on les compare avec les populations noninbred comme précédemment examiné (F ORAPANI et al. 2001 ). Le pourcentage de polymorphisme détectable par analyse RAPD (trois amorces) variait de 17,3 à 46,4% ( tableau 1 ), alors qu'il a été rapporté que 65 à 80% au sein de la commune italienne de fibres français et la plupart des cultivars (F ORAPANI et al. 2001 ).
F 1 hybrides:
Lorsque le S 2 plantes ont été croisées mutuellement comme indiqué dans le tableau 2 , tous les F 1plantes examinées contenaient à la fois de la CDB et de THC dans considérables quantités, et pas chémotypes pure ont été découverts. Un exemple de la distribution de la F 1 plantes (F 1 99,3) dans un CDB vs parcelle THC est présenté dans la figure 2 , où les valeurs des plantes parentales sont également indiquées. figure 2 montre un effet hétérosis pour les cannabinoïdes contenu total (CDB + THC), et notamment une forte augmentation de la teneur de la CDB F 1 's par rapport à la CDB contenu parental. Des tendances similaires ont été trouvés dans deux de l'autre F 1 'art Cependant, il n'y avait pas un tel effet sur le total du contenu des cannabinoïdes dans le F 99.4 1 .

Figure 2. CDB vs . teneur en THC du 99,3 F 1descendance. Les positions de la F 1 plantes sont indiqués par des triangles ouverts; leurs parents (appartenant à la ligne CDB 94.4.12.63 et à la ligne de THC 55.22.7.10, respectivement) sont indiqués par des carrés vides. La teneur en cannabinoïdes est exprimée en pourcentage du poids de la matière sèche, mature inflorescence.
Étonnamment, la CDB / THC semble varier d'une manière claire -voie spécifique descendance. Le ratio moyen varie de façon significative ( P <0,001) de 0,50 (F 1 99,4) à 1,57 (F 1 99,5), où seulement quatre usines ont pu être analysés ( Tableau 3 ).

Tableau 3. CBD / ratios THC des plantes hétérozygotes
L'analyse moléculaire de la F 1 plantes a été à nouveau réalisée en utilisant trois amorces RAPD et en comparant les loci identifiés dans les plantes parentales avec ceux présents dans la F 1 descendances.Au cours des quatre descendances, de 5,6% (99,3) à 37,5% ( 99,4) des loci RAPD a marqué dans les usines de parents séparés dans la F 1 (données non présentées). Cela indique qu'un nombre significatif encore de loci ont été à l'état hétérozygote dans le S 2 parentals.
F 2 lignées:
La CDB contre des teneurs en THC de l'un des F 2 de l 'examen sont tracées dans la figure 3 . Au sein de chaque F 2 , les individus pourraient sans aucun doute être attribué à trois différents groupes de ségrégants sur la base des discontinuités importantes dans le CBD / ratios calculés THC. Les donnéessur la ségrégation des chémotypes dans le F différents 2 's sont indiqués dans le tableau 4 . Pour tous les F 2 's, les résultats de la 2 test accepté le modèle d'un seul locus avec deux allèles codominants. Dans les F 2 d 'où les ratios de ségrégation plus dévié de 1:02:01 plus grand ( 2 valeurs), il est resté constamment en raison d'une sous-représentation des chémotypes CDB pure.

Figure 3. CDB vs . parcelle teneur en THC du 99.6.14 F 2 descendance (cercles). Les positions des F seule une plante (triangle ouvert), auto-fécondé pour obtenir ce F 2 , et de la CDB et pure-pure-THC parents initial (carrés vides) sont indiqués.Cannabinoid contenu est exprimé en pourcentage du poids de la matière sèche, mature inflorescences.

Tableau 4. données de ségrégation Chémotype
Comme dans la F 1 's, la CDB / THC pour les plantes hétérozygotes dans la F 2 de l 'apparut de nouveau d'être fortement dépendante descendance. ANOVA et de comparaisons multiples au-squared différence (LSD) test effectué sur hétérozygotes / ratios THC CBD de tous les F évalué 1 et F 2descendances ont montré des différences significatives entre les très descendances ( P <0,001;tableau 3 ). En particulier, les 99,4 descendants forment un groupe distinct très car ils sont constitués des hétérozygotes ayant une plus forte proportion beaucoup plus de THC que de la CDB. Dans tous les autres descendants de la proportion de la CDB chez les hétérozygotes dépasse, à des degrés divers, la proportion de THC. Petite, mais néanmoins significatif, les différences dans la moyenne de la CDB / THC ne se produisent chez les descendances partage le même pedigree. Toutefois, la F 1 CBD / ratios THC (évalué dans une année différente de la F 2 rapports) sont transmis avec peu de changements très à l'hétérozygotes de la correspondante F consanguines 2 'art
Les marqueurs moléculaires associés à chémotype:
La coupe nette ségrégation observée dans tous les F 2 d 'considéré comme permis l'application de l'analyse de ségrégants en vrac (BSA; M ICHELMORE et al. 1991 ) Stratégie pour trouver des marqueurs moléculaires liés à chémotype. Sept paires de vracs d'ADN ont été réalisés, correspondant à la F 2 descendances 99.3.10, 99.3.49, 99.4.2, 99.4.6, 99.4.10, 99.5.5, 99.6.25 et, et chacun était composé de 8 - 10 ADN des groupes chémotype contrastées. Cinquante amorces RAPD ont été utilisés pour cribler les sept volumes, et 400 bandes ont été marqués. Dans plusieurs cas, les bandes discrimination une ou plusieurs des vracs ont été observées, mais seulement trois amorces, OPA07 (5'-GAAACGGGTG-3 ') et OPB06 (5'-TGCTCTGCCC-3 ') de Operon Technologies et UBC109 (5'- TGTACGTGAC-3 ') de l'Université de la Colombie-Britannique, a produit trois bandes, deux THC et CBD une associée, une discrimination six ou sept paires de vracs ADN. La bande associée à la CDB (UBC109620 ) a été 620 bp, tandis que les deux associés à des marqueurs de THC (OPB06 1000 et OPA072100 ) ont été 1000 et 2100 pb. Les bandes RAPD discriminant les chémotypes au sein de chaque bloc sont présentés dans la figure 4 , a-c. Les associés-bandes chémotype ont ensuite été examinés dans la seule usine ADN comprenant les vracs. Les résultats sont résumés dans le tableau 5 .Marker OPA07 2100 semblait être le plus efficace car elle est présente dans toutes les usines de THC et dans seulement 2 des plantes de la CDB 61 examinés. Marker OPB06 1000 est tout aussi efficace pour les plantes THC, mais il a été détecté dans 6 des plantes de la CDB 61, ainsi. Marker UBC109 620 , CDB associés, est présent dans tous les F CDB 2 de l 'exception de 99.5.5, où seulement 1 usine de 9 constamment montré le marqueur. Le même marqueur est également présent dans 12 des 61 THCplantes examinées. En général, si l'absence d'association peut être attribuée à la recombinaison génétique entre le locus chémotype et le marqueur, puis le marqueur OPA07 2100 avait 1,3% de recombinaison, marqueur OPB06 1000 a 5,3%, et UBC109 marqueur 620 avait 10,3%, calculée comme moyenne de toutes les sept F 2 'art

Figure 4. Résultat de l'amplification médiée par les amorces RAPD trois OPA07, OPB06, et UBC109 (a-c) sur l'ADN en vrac de THC (T) et la CDB (C) des différents ségrégants F sept 2 's énumérés dans le tableau 5 . Les flèches indiquent les deux THC-(a et b) et la CDB-(c) des fragments d'ADN spécifiques. (D) L'amplification produite par le marqueur SCAR obtenus sur la base de la séquence du fragment spécifique THC montré en b; chaque couloir montre le résultat de l'amplification de l'ADN des plantes isolées, le THC pur (T), la CDB pure ( C), ou mixte (H). M indique que le marqueur de poids moléculaire (-ko échelle 1; Life Technologies).
Tableau 5. associés à des marqueurs Chémotype
Les trois marqueurs ont été séquencés et différentes combinaisons de 20-mer des amorces spécifiques ont été construits sur la base de la séquence d'ADN et testés. Les meilleurs amorces ont été trouvés àêtre dérivée de la borne OPB06 1000 , à l'origine THC associés. Ce-région amplifiée de séquence (SCAR) marqueur, appelé B190/B200, a été testé sur toutes les plantes unique de la F 2 de l ' examen, le THC pur , pure de la CDB, ou hétérozygote CBD / THC, et sur tous les S 2 plantes de la croix parents d'origine. Le résultat de l'amplification d'ADN amorcée par des amorces B190/B200 (avant, 5'-TGCTCTGCCCAAAGTATCAA-3 '; inverse, 5'-CCACTCACCACTCCACCTTT-3 ') est représenté sur lafigure 4D . Le phénotype THC est associée à l'amplification d'une bande de poids moléculaire d'environ 190 pb, alors que la CDB pure plantes montrent une bande de 200 pb. plantes hétérozygotes montré que les deux fragments dans la plupart des cas, ce qui indique que ce marqueur a eu l' caractéristiques codominance même que le locus chémotype; ces plantes ont également montré une bande supplémentaire à poids moléculaire élevé ( 250 pb). L'efficacité du marqueur B190/B200 pour prédire le chémotype des plantes examinés dans ce travail sont résumées dans le tableau 6 . Fait remarquable, l'efficacité avec laquelle la concurrente apparition de deux marqueurs identifiés les chémotypes hétérozygote est de 95,3%. Ces valeurs ont été calculées sur la base des résultats des marqueurs dans 63 usines appartenant à la S 2 lignées pures, dans 39 usines différentes de la F quatre 1's, et dans 246 usines de la F différents 2 'art Les parties séquencé des fragments d'ADN générés par les amorces RAPD ont été trouvés à partager aucune différence significative d'homologie avec les séquences d'ADN publiées pour le THC et CBD synthases (NOS GenBank;. E55108/GI 18629739 et E33091 / GI 18623981 brevet en instance) .

Tableau 6. Liaison des chémotypes avec le marqueur B190/B200
DISCUSSION
Au sein des populations de cannabis, de grandes variations dans cannabinoïdescomposition et le contenu peut être trouvée parmi les plantes individuelles.Par conséquent, pour étudier l'héritabilité du caractère de chémotype, nous avons choisi d'utiliser pures, les lignes féminines avec fixe, chémotype pure. données RAPD a confirmé la réduction relative des la base génétique des plantes parentales en raison de cette stratégie (tableau 1 ). Dans le parentale S 2lignes, le pourcentage de la cannabinoïdes principaux (PC n ) variait de 84 à 98% de la fraction totale cannabinoïdes C tot . Pour la F1 99,3, 99,5, et 99,6 et pour leur F 2 enfants, la somme de la CDB et de THC atteint des proportions de 95% de C tot . Les fractions restantes sont composés de différents mélanges de la CBG, CBC, THCV, et CBDV. Le F 99,4 1 's et leurs F 2 descendants ont une plus faible proportion de la CDB + THC (91%). Cela était dû à une présence constante des quantités plus élevées de la CBG, une caractéristique héritée des deux parents de cette descendance.
L'uniformité de la F 1 et F chémotypes 2 ratios de ségrégation en évidence la présence d'un seul locus, qui est visée sous le nom de B , indiquant l'hérédité mendélienne simple des deux allèles, B D et B T , comme en témoigne cette étude. Le modèle propose que un CBD végétale pure a un B D / B D génotype au B locus, alors une usine de THC pur a une B T / B T génotype. F 1 et 50% de la F 2 plantes sont donc hétérozygotes B D / B T , avec les deux allèles codominants et donc être en même temps exprimé dans les hybrides. L'hypothèse de deux allèles à un locus a été acceptée par 2 tests pour tous les F 2de l 'examen ( Tableau 4 ). Ce modèle est d'accord avec l'hypothèse d'un héritage monogéniques exprimée par B écus et al. 1998 .
Il faut reconnaître que ces résultats peuvent également s'expliquer par l'hypothèse de deux loci en double, l'un codant pour une synthase de la CDB et l'autre pour une synthase THC, la cartographie ainsi que l'observation de près de rupture de liaison a été impossible dans les descendances étudiées. Une telle situation a été trouvé dans les différents cas de gènes du métabolisme secondaire où les membres de double codage pour les enzymes catalysant soit consécutifs métaboliques ou des réactions des mesures alternatives à partir d'un précurseur commun. Dans le maïs, une famille de quatre gènes dupliqués (BX2-5) a été montré à coder pour le cytochrome P450 monooxygénases dépendantes, chaque catalyser l'une des étapes consécutives de l'indole à 2,4-dihydroxy-7-méthoxy-1 ,4-benzoxazine -3-one (DIMBOA) de synthèse (F REY et al. 1995 ; G LAWISCHNIG et al. 1999 ). Chez Arabidopsis, les gènes codant pour différentes 2-oxoglutarate dépendante dioxygénase (AOP1-3) ont été identifiés comme responsables de la synthèse des différents glucosinolates; ces gènes carte pour la position et le même code pour les réactions de remplacement à partir d'un précurseur commun, conduisant à 3 - hydroxypropyle et-butényle glucosinolates 3 (K Liebenstein et al. 2001 ). Ces auteurs ont pu également identifier une recombinantes (RI) en ligne doté d'allèles nuls, l'accumulation de la 4-methylsulfinylbutyl glucosinolates précurseur. gènes AOP ont été considérés comme en double, plutôt que comme allélique, essentiellement sur la base de la présence d'un cluster de gènes candidats dans le génome d'Arabidopsis séquencé. D'ailleurs, peu d'homologie n'a été trouvée entre AOP et d'autres gènes, même si un 60-70% d'homologie de séquence a été trouvée parmi les composants de cluster. Dans le cas des gènes cannabinoid, cependant, bien que la possibilité de la présence de gènes dupliqués ne peut pas être écartée sur la base des expériences présentées, les conséquences d'un modèle avec locus dupliqués doivent être examinés. Si lignées parentales CDB effectué allèles défectueux au THC locus (THC / CBD-THC / CBD ) et les lignes de THC à la CDB locus ( THC / CBD-THC / CBD ), une étude analogue, chemotypically uniforme, F 1 aurait été trouvé, ainsi que la ségrégation même chémotypes dans la F 2 . Théoriquement le dépistage des populations à grande échelle devrait révéler l'existence de fixe dominant homozygote doublement ( THC / CBD-THC / CBD ), montrant deux cannabinoïdes: ces plantes ne doit pas séparer le autofécondation. Une telle situation n'a jamais été observée pendant plusieurs années du dépistage génétique et autofécondation dans les programmes de sélection. Suite de l'examen donne à penser que s'il y avait des chances d'une croix qui sépare les deux locus dupliqués, lechémotype GBC ( THC / CBD-THC / CBD ) doivent être observés plus fréquemment que ce qui a été effectivement observé. En fait, dans les populations où une fréquence élevée de tous les trois chémotypes se trouve, comme dans variétés haschich, les allèles récessifs de la CDB et de THC devraitse produire avec une fréquence significative et, en raison de la nécessité de cannabis outbreeds, devrait avoir une bonne chance de se produire dans le homozygote de l'État. Au lieu de cela, les plantes GBC ont été détectés chez les cultivars de fibres qui, selon un modèle à deux locus, devrait avoir une très haute fréquence de la CDB et de THC allèles. Par conséquent, même extrêmement basses fréquences de la CDB allèle devrait conduire à GBC fréquentes chémotypes, en raison de la quasi-absence de THCallèles en fibres de chanvre. À l'inverse, encore que quelques rapports de plantes isolées montrent le chémotype GBC (F OURNIER et al. 1987 ; G. G RASSI et V. G. V IROVETS , communications personnelles), ce qui suggère une très faible fréquence de ce chémotype, en dépit de l'observation selon laquelle les plantes portant les allèles défectueux subi aucune perte de vitalité (G. FOURNIER , communication personnelle).
Ces faits sont plus exposé de manière convaincante par la rareté d'une mutation B 0 allèle pour un enzyme défectueux à un seul locus. H ORKAY 1986 estimé le degré d'auto-fécondation in populations monoïques, comme les cultivars français dans lequel les plantes GBC ont été trouvés, à 20-26%, et il est donc concevable qu'une mutation, allèle inactif au locus B pourrait avoir prospéré grâce répétées et consanguinité fréquente jusqu'à se fixer dans quelques plantes.
Bien que basé sur des preuves négatives, il est de notre avis que le modèle d'un seul locus allélique régissant la synthèse de la CDB et THC explique mieux la distribution chémotype dans les populations de Cannabis.
Dans ces F 2 d 'où les ratios de ségrégation plus dévié de (la plus grande 01:02:01 2 valeurs), il est resté constamment en raison d'une sous-représentation des homozygotes CDB, peut-être un effet récessif d'une semilethal facteur vaguement associés au B D allèle. Pour le 99.3.34 F 2 , la viabilité des graines différentiel et la survie des semis pourrait expliquer la faible proportion d'homozygotes CDB. Les autres F 2 's avec plus 2 valeurs ont montré une perte négligeable de semences et plants. Le semilethal facteur pris dans ces descendances doit donc déjà être effective au cours de l'embryogenèse. Uneindication supplémentaire de la viabilité réduite de la B D / B D génotype est fournie par la chute spectaculaire de la fécondité dans les usines de la CDB pure lors de la sélection de ligne, un phénomène qui est généralement absente dans les lignées THC (données non présentées). Bien que l'on peut s'attendre à plus de fibres cultivars d'avoir le B D / B D génotype, au meilleur de notre connaissance il n'existe pas de rapports sur la viabilité et la fertilité réduite de ces souches, par comparaison avec les populations à haut-THC. Toutefois, seulement une ségrégation de la population pourrait fournir chemotypically bonne preuve d'un tel phénomène, comme tous les autres traits génétiques contribuant à la viabilité et la fertilité doivent être randomisés entre les groupes chémotype.
Dans trois des quatre F 1 descendances, le contenu de la CDB a été plus élevée que dans la CDB parentale ( Fig 2 ). Cela peut s'expliquer par le fait que la CDB lignées parentales, généralement issus de souches de fibres, ont des valeurs faibles pour P flor et C tot (voir l'équation 1 ). Ces composants, polygénique dans la nature, montrent un fort effet hétérosis, par conséquent, le B D allèle de F 1 est actif dans les plantes beaucoup plus productive que celle environnement génétique dans les lignées parentales. Cela ne vaut pas pour les B T allèle, qui vient déjà de la drogue avec des souches de haute P flor et C tot valeurs.
Lorsque vous travaillez avec les jeunes, les matériaux végétatifs, les mécanismes moléculaires des marqueurs décrits peuvent être plus efficaces que les chromatogrammes GC dans le génotypage des plantes pour leur chémotype. Les marqueurs RAPD initialement identifiés ont été complètement dominante, comme prévu à partir d'une PCR marqueur, mais le B190/B200 marqueur, l'un des marqueurs SCAR développés sur la base des informations de séquence, se comporte codominantly ( figure 4D ).Les deux types de marqueurs apparaissent étroitement liées à la chémotype dans les pedigrees examinés jusqu'ici ( tableau 5 et tableau 6 ). Le marqueur B190/B200 pourraient être mises à profit dans letravail de sélection, mais à l'heure actuelle nous n'avons pas de données sur son utilité au-delà des Les croisements réalisés dans cette étude. Le marqueur semble particulièrement approprié pour distinguer la CDB pure et hétérozygotes plantes, qui peuvent être très utiles quand counterselecting pour le THCchémotypes dans l'élevage fibres de chanvre.
La synthèse de THC et CBD de plants de cannabis a été décrite comme une oxydo-réduction couplée à une cyclisation de la CBG, catalysée par une teneur en THC et un synthase CDB, respectivement. A synthase CBC a également été décrite, catalyser une réaction similaire conduisant à CBC. Ces enzymes ont été isolées de différents médicaments ou de la fibre souches, et beaucoup de leurs caractéristiques ont été élucidées. La plupart des propriétés de la CDB et synthase THC étaient très similaires, comme la masse (75 kD), l'existence comme un monomère localisée dans le cytosol, le pi, le pH optimum, la constante de vitesse k cat , la V max , et le K m pour leur substrat. En outre, le NH 2 -terminale des séquences des deux synthases partagé 87% de l'identité (T AURA et al. 1995 , T AURA et al. 1996 ). Les propriétés décrites pour la synthase de Radio-Canada (M Orimoto et al. 1998 ) Ont été tout à fait différente; cette enzyme a montré une plus faible K m(23 μ M au lieu de 134 et 137 μ M des deux autres synthases), un chiffre d'affaires nombre moins élevé (k cat = 0,04 s -1 contre 0,19 et 0,20 de la CDB et le THC synthase). On peut supposer que chacun des allèles identifiés dans ce travail, à savoir , B D et B T , code pour une isoforme de la même enzyme, la spécificité montrant pour la conversion de la CBG à la CDB , ou THC, respectivement. Dans l'état hétérozygote, les deux isoformes seraient présents et donc à la fois les conversions se produirait, en conformité avec les chémotypes mixtes observées dans la F 1 's et dans la moitié de la F 2 plantes.Cette hypothèse, présentée ici pour la première fois, est également soutenu par la récente publication de la séquence d'ADNc de la CDB et synthases THC, les deux séquences de 89% d'identité action, et la plus longue période sans correspondance est de quatre nucléotides. Le fait que, selon T AURA et al. 1995 , T AURA et al. 1996 , Les deux ont les mêmes affinités synthases très pour la CBG, théoriquement, devrait entraîner des ratios THC CBD près de 1,0 en B D / B T génotypes. Il est curieux que les différentes combinaisons parentales examinées dans nos différentes expériences montrent CBD / ratios de THC dans le F résultant 1 hybride, souvent fortement divergentes de 1,0 et assez stable hérité par le F 2 hétérozygotes ( tableau 3 ). Certains des facteurs héréditaires semble affecter l'équilibre entre la CDB et synthase THC dans leur concurrence pour convertir le précurseur GBC. Si ce facteur été à un locus différent, la ségrégation pour la CDB / THC dans la F 2 de l 'doivent être respectées. Toutefois, comme le montre la figure 3 , dans un F 2 descendance il n'ya pas depreuves de plusieurs grappes distinctes hétérozygotes avec des pentes . Il est donc possible que B D etB T font partie d'un plus large série allélique, codant pour plusieurs formes isoenzymatiques de la CDBsynthase et synthase THC, respectivement, avec des affinités différentes pour le substrat GBC, ce qui entraîne significativement différents ratios THC CDB hétérozygotes. Lorsque les deux parents sont homozygotes sont croisées, l'une avec une isoforme de certains synthase CDB, l' autre avec une isoforme de certains synthase THC, la CDB / THC dans la F 1 de l 'dépendra de l'équilibre entre l'efficacité des deux synthases et restera fixé dans n'importe quelle autre hétérozygote descendant obtenues par autofécondation.
Les données obtenues dans ce travail ne tiennent pas compte de l' héritage de la conversion de la CBG dans CBC. En principe, il est possible de supposer l'existence d'un allèle en outre, B C , à la B locus, codant pour une synthase CBC (M Orimoto et al. 1998 ), Mais aucune preuve directe est disponible et il ya la possibilité qu'un locus différents pourraient être impliqués. synthase CBC a été initialement isolé à partir d'un stade juvénile d'une souche de la CDB, et encore il s'est avéré très difficile d'obtenir des plantes CBC pure, même si les plantes atteignent des proportions CBC jusqu'à 64% du total des fractions cannabinoïdes ont été signalés (H Olley et al. 1975 ).
Le modèle de la biogenèse des cannabinoïdes avec ses relations entre les allèles et chémotypes résultant est illustré sur la figure 5 . Dans ce schéma, il est supposé que la voie menant à la CBG ou CBGV est régie par au moins un locus allélique, appelé A , sur lequel les expériences présentées ici ne donnent aucune information. Toutefois, il existe des preuves de l'existence de "null" génotypes à la Une locus, conduisant à des plantes dépourvues de cannabinoïdes; phénotypes tels ont en effet été observé (VG VIROVETS et G. G RASSI , communication personnelle). Les voies présentées sont cohérentes avec l'hypothèse de S HOYAMA et al. 1984 que le synthases caractérisés à ce jour permet de convertir tout aussi bien à la fois la CBG et CBGV dans les produits finis THC (V) et la CDB (V). Cette hypothèse est également soutenue par notre observation selon laquelle des traces CBDV ont été détectésseulement chez les homozygotes CDB ( B D / B D ) et des hétérozygotes ( B D / B T ), alors que lestraces THCV eu lieu exclusivement dans les homozygotes THC ( B T / B T ) et hétérozygotes (données non présentées).

Figure 5. Le modèle génétique présenté postule l'existence de deux locus distincts, A et B . Locus Apossède deux allèles différents A Pr et A Pe , responsable de la synthèse de l'une ou l'autre propyle ou la forme de pentyle cannabigerol (CBG ou CBGV, avec R 1 =-C 3 H 7 et R 2 =-C 5 H 11 ) . Locus B a allèles différents, chacun responsable de la conversion de la CBG (V) dans les produits finis de la CDB (V) et du THC (V) qui s'accumulent dans les inflorescences. Le B 0 codes allèle pour une enzyme non fonctionnelle, ce qui conduit à la CBG (V) accumulation. Tous les cannabinoïdes sont établis dans leur forme neutre.
Dans les matériaux étudiés, la proportion de la CDB et de THC atteint, au mieux, 96-98% de la fraction totale des cannabinoïdes. En général, même après cinq cycles de consanguinité de sélection visant à une cible de cannabinoïdes, au moins une impureté 2-4% constitué d'autres cannabinoïdes reste. Par conséquent, les allèles postulé ici, même dans les génotypes homozygote, semblent avoir une imparfaitecontrôle sur les événements de biosynthèse. Apparemment, l'une des formes isoenzymatiques postulé codées par les allèles au B locus montrent une capacité résiduelle pour convertir le précurseur GBC (V)dans d'autres cannabinoïdes que le plus important.
L'existence d'un seul locus déterminant le chémotype, avec au moins deux allèles, donne un sens clair génétiques de la tripartite de distribution de l'chémotypes au sein des populations, comme observé par plusieurs auteurs lors de la CDB vs parcelles teneur en THC sont considérés comme des(F OURNIER et P ARIS 1979 ; F OURNIER 1981 ; DE M EIJER et al. 1992 ). Selon notre modèle, ces parcelles ne sont pas seulement montrer la distribution des phénotypes, mais ils visualisent l'allèle de fréquence dans une population. Il devrait être possible d'étudier les fréquences de la B D et B Tallèles et leurs évolutions au cours du temps en fonction de la structure de la population, l'action desconditions environnementales, et les valeurs de remise en forme différentes réalisées par eux. Une autre conséquence du fait que la CDB vs THC parcelles sont en réalité à prendre en compte la distribution des parcelles allèle est que pas d'obstacles entre les différents chémotypes du cannabis peut être postulée.Les plantes qui sont distribués différemment dans un CDB vs parcelle THC n'ont pas de grandes différences génétiques, seulement différents allèles à un locus unique. Par conséquent, les plus couramment pratiquée application de chémotype comme critère taxonomique est très discutable.Probablement un caractère polygénique, tels que la teneur totale en cannabinoïdes, est mieux équilibrée et conservés dans les populations et est donc un critère plus robuste avec laquelle de taxons sub discrimination.
Dans le travail présenté ici, la stratégie de réversion du sexe partielle de plantes femelles a été utilisée pour obtenir S 2 , F 1 's, et F 2 de l '; encore les résultats obtenus devraient également vrai si dioïquesplantes avaient été utilisés comme parentals ou F 1 plantes ont été croisées pour obtenir la ségrégation F2 'art Le modèle proposé ici est donc hautement prédictifs et vise à stimuler de nouvelles recherches: il fournit un outil pour élucider l'existence éventuelle d'autres loci génétiques régulant la composition des cannabinoïdes.
NOTES
1 Adresse actuelle: GW Pharmaceuticals plc Science., Porton Down Park, Salisbury, Wiltshire SP4 0JQ, Royaume-Uni.
REMERCIEMENTS
Nous tenons à remercier la sélection végétale et chimie analytique de l'aide Tina Ent (Horta Pharm BV) et Kathy Hammond (GW Pharmaceuticals plc.) pour la révision du texte. Ce travail a été financé en partie par le ministère italien de l'Agriculture et des Forêts dans le cadre du projet «d'induction de marqueurs phénotypiques et l'amélioration du chanvre commun. "
Manuscrit reçu le 23 avril 2002; Accepté pour publication Octobre 16 mai 2002.
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